pcr技术中dna聚合酶的作用(高保真DNA聚合酶Pfu-sso7d表达与纯化详细教程)
pcr技术中dna聚合酶的作用(高保真DNA聚合酶Pfu-sso7d表达与纯化详细教程)-20冰箱卡那霉素储存液(10mg/mL MP实验室通常使用浓度)主要材料BL21(DE3)感受态细胞(商业化产品或自制)LB培养基(固体以及液体)
“五亩之宅,树之以桑,五十者可以衣帛矣”
——孟子
本教程提供了快速高保真DNA聚合酶Pfu-sso7d的表达与纯化步骤。Sso7d为双链DNA结合蛋白,关于Sso7d融合技术带来的好处详见Wang Yan的文章1。
本文主要参考Barrick Lab2的纯化方案,同时跟自身纯化经验进行细节优化。
主要材料
BL21(DE3)感受态细胞(商业化产品或自制)
LB培养基(固体以及液体)
卡那霉素储存液(10mg/mL MP实验室通常使用浓度)
-20冰箱
紫外分光光度计
French Press(更普及的是超声破碎仪)
IPTG(1M储存液)
PMSF或者其他蛋白酶抑制剂
一次性离心管耗材,50mL,15mL ,如康宁品牌
高速离心管(Nalgene)
高速离心机(最好带冷冻功能)
控温水浴锅
Ni-NTA填料(Qiagen)
即用型透析袋(Snakeskin,10kDa MWCO)
磁力搅拌器
PCR仪器
台式离心机以及其他实验室常用仪器与耗材。
表达质粒
pET28a-Pfu-sso7d。序列参考Barrick Lab。
缓冲液
裂解/柱平衡液:
50 mM NaH2PO4
300mM NaCl
10-20mM 咪唑
使用NaOH调节pH至8.0,25℃
清洗液:
50 mM NaH2PO4
300mM NaCl
40 mM 咪唑
使用NaOH调节pH至8.0,25℃
如使用AKTA或类似层析系统,可以通过层析系统形成线性咪唑浓度,因此不必准备清洗液。手动纯化时,也可以使用平衡液与洗脱液按比例配置得到合适浓度。但是化学或者说数学不好的人,最好提前备好。
洗脱液:
50 mM NaH2PO4
300mM NaCl
250 mM 咪唑
使用NaOH调节pH至8.0,25℃
聚合酶储存缓冲液
50% 甘油
30 mM Tris-HCl,pH 8.0
0.1 mM EDTA
0.1% NP 40(或者其他去垢剂,如TWEEN 20)
1 mM DTT
蛋白表达
规模:2个500mL的LB液体培养。
第一天:转化pET 28a-Pfu-sso7d质粒到含Kan抗性的LB平板。
第二天:挑取单克隆菌落,以2-3mL液体培养摇菌。最好做一次菌落/菌液PCR以验证单菌落非污染,引物为通用引物T7、T7Ter,或者Pfu序列特异性引物。
晚上转接10mL的液体培养基,过夜培养。
第三天:以1%的量接500mL LB培养基,加入0.5%-1%的葡萄糖以抑制基底(渗漏)表达,减低毒性。
37℃ 200rpm震荡培养,至OD600到0.6-0.1。加入终浓度0.5mM-1 mM的IPTG。
继续培养2-4小时。
如夜间加班做实验,则收集菌体后立即进行破碎。如不打算加班,则收集菌体后-80℃保存。
蛋白纯化
第四天(或者第N天,菌体在-80℃冰箱可以存放很长时间)
以1g湿重-10mL 裂解液的比例加入裂解液,悬浮。加入PMSF至终浓度1mM。
超声破碎。
在70℃加热15-30 min。此时宿主蛋白大部分变性失活。
4℃ 以最大或者接近最大转速离心30 min,取上清。
使用0.22uM滤膜过滤,滤液即可加入到纯化柱内进行柱纯化操作。
(在此描述步骤为依靠重力的手动Ni-NTA纯化操作方法)
使用5倍柱床体积(Column Volume,CV)的去离子水清洗纯化柱,除去20%保存液,然后以5倍CV的裂解液平衡纯化柱。
以5倍CV 的清洗液洗杂蛋白。
使用约1CV的洗脱缓冲液,洗脱目的蛋白。
透析:
透析旨在除去高浓度咪唑以及NaCl,将酶置换到储存缓冲液中。
因酶储存缓冲液含50% 甘油,因此通常透析结束时酶溶液体积会缩小。
剪切合适长度的一段Snakeskin透析膜,夹住一头,将洗脱的酶溶液加入透析膜中,再用夹子封住另一端口。
4℃透析3小时以上,或者过夜之后换新的储存液。一般三次换液可认为透析完全。
酶浓度与活性测试
将透析后所得酶转移到合适的管内,-20℃保存。
取其中小量,稀释成一系列梯度,通过SDS-PAGE检测纯度与蛋白大小。
活性测试
将梯度浓度的Pfu-sso7d与商品的酶进行PCR,进行活性对比,如Phusion,或者NEB Q5 DNA polymerase。
可在NEB购买商品化的反应Buffer。或者自己配置
以下Buffer配方可用
5X HF Phusion Buffer
150 mM Tris-HCl pH 10
50 mM KCl
50 mM NH4OAc
10 mM MgSO4
0.5% Triton X-100
0.5 mg/mL BSA
PCR反应体系与热循环参数
Reaction Mix
Reagent |
Volume/ul |
Water |
12.4 |
dNTP (10mM) |
0.4 |
5× buffer |
4 |
Primer F (10uM) |
1 |
Primer R (10uM) |
1 |
Template (2ng/ul) |
1 |
Diluted polymerase |
0.2 |
Cycle |
Temperature |
Duration (secs) |
Initial denaturation |
98 |
30s |
Repeat Cycle 30× | ||
Denaturation |
98 |
10s |
Annealing |
69 |
20s |
Extension |
72 |
30s / kbp |
End Cycle | ||
Final extension |
72 |
5m |
可以用简单的模板,如质粒DNA扩增2-6kb片段进行酶活浓度测定
如需更为精确优化配方,还需更多测试。
至此,一个可以使用多年的快速高保真Pfu聚合酶就基本完成了。经历如此复杂的过程其核心动力在于经济考虑。
试想一个PCR试剂用量大的实验室一年可以从PCR Mix自产自足中节省多少经费?
更为重要的是,PCR试剂自由,那种做起PCR来不要钱的感觉,真的很爽!
成本核算
Pfu-sso7d基因合成:2600bp,约2600元
Snakeskin:约1600一卷
其它,能够表达纯化蛋白的实验室常备,边际成本可以接近于零。
时间:看是谁的时间,这个无法衡量。
MMLV、Pfu-sso7d国外学者自产(homemade)鉴定图
图片源自网络平台3
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作为一家新兴的分子生物学酶研发、生产、销售公司,我们致力于为客户提供性能先进、质量可靠的生命科学科研试剂。同时我们也注意到部分客户对于某些产品价格偏高的不满,以及对DIY的渴望,由此,我们也试想能否取得某种平衡:
即公布一般性的高保真酶纯化方法,同时为了避免质粒合成的重复浪费,我们很乐意有偿提供Pfu-sso7d表达质粒(不高于全新合成一个2600bp左右基因的价格),以及高质量、更为实惠价格的dNTP(大批量进口,分装)。
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参考文献:
1.Yan Wang et al. A novel strategy to engineer DNA polymerases for enhanced processivity and improved performance in vitro. Nucleic Acids Res. 2004; 32(3): 1197–1207.
2.https://barricklab.org/twiki/bin/view/Lab/ProtocolsReagentsPfuSso7d
3.Vonesh et alMcQ – An open-source multiplexed SARS-CoV-2 quantification platform. https://www.medrxiv.org/content/10.1101/2020.12.02.20242628v1.full
4.https://barricklab.org/twiki/pub/Lab/ProtocolsReagentsPfuSso7d/6his-pfu-sso7d-pET28.gbk
附录
pET28a-Pfu-sso7d序列4